Sterylizacja narzędzi i sprzętu. Sterylizacja urządzeń do znieczulenia i wentylacji mechanicznej Dezynfekcja i sterylizacja sprzętu anestezjologicznego i oddechowego

Dezynfekcja podzespołów, poszczególnych podzespołów i zespołów IN oraz respiratorów

Tabela. Narażenie i stężenie roztworów dezynfekcyjnych stosowanych w leczeniu infekcji beztlenowych i gruźlicy. Kliknij, aby powiększyć

Elementy wykonane z gumy i tworzyw sztucznych: rurki intubacyjne, kaniule tracheotomijne, przewody powietrzne ustno-gardłowe, maski twarzowe, ustniki. Elementy łączące: złączki, adaptery, trójniki, mufy przyłączeniowe, elementy zaworu zwrotnego dezynfekujemy dowolnym z poniższych środków dezynfekcyjnych: 3% roztworem nadtlenku wodoru (180 min.), 3% roztworem formaldehydu (30 min.), 3 % roztwór chloraminy (60 min.), 1% roztwór dezoksonu (20 min.) w temperaturze od 18 do 20 stopni Celsjusza. Po dezynfekcji produkty myje się kolejno w dwóch porcjach sterylnej wody, następnie suszy i przechowuje w warunkach aseptycznych.

Węże oddechowe: mały wąż karbowany, korpus nawilżacza, kolektory kondensatu myje się wodą, umieszcza w roztworze myjącym (0,5% nadtlenek wodoru z roztworem myjącym), a następnie podgrzewa do temperatury 50 stopni. Następnie należy umyć części gazikiem i spłukać części bieżącą wodą. Umieść w jednym z roztworów dezynfekujących:

  • 1% roztwór dezoksonu
  • 3% roztwór nadtlenku wodoru
  • 3% roztwór formaldehydu
  • 3% roztwór chloraminy
Czasy ekspozycji na te środki dezynfekcyjne podano powyżej
Po dezynfekcji produkty myje się kolejno w dwóch porcjach sterylnej wody, a następnie dokładnie suszy

Worek oddechowy (futro) napełnia się roztworem myjącym (0,5 nadtlenku wodoru z roztworem myjącym), wstrząsa (w celu lepszego wypłukania), płucze wodą i zanurza w pojemniku w jednym z roztworów dezynfekcyjnych:

  • 3% roztwór nadtlenku wodoru
  • 3% roztwór formaldehydu
  • 3% roztwór chloraminy
  • 1% roztwór dezoksonu
Po dezynfekcji worek oddechowy przemywa się sterylną wodą i wprowadza w szyję ekspander. Futro suszy się w stanie zawieszonym w warunkach aseptycznych.

Kanał powietrzny układu krążenia, zawory recyrkulacji (wdechu i wydechu), zawory bezpieczeństwa gotuje się w wodzie destylowanej lub zanurza we wskazanych powyżej roztworach dezynfekcyjnych. W urządzeniach „Polinarkon-2”, „Polinarkon-2P”, „Narkon-2”, „RD-4” konieczne jest całkowite zdemontowanie kanału powietrznego i zaworów
Po dezynfekcji produkty myje się kolejno w dwóch porcjach sterylnej wody i dokładnie suszy sterylnym prześcieradłem.

Przed dezynfekcją adsorbera, adsorbent jest z niego usuwany, a następnie napełniany roztworem myjącym i podgrzewany

Ramę adsorbera przeciera się gazikiem nasączonym roztworem myjącym.

Adsorber - uszczelka zanurzana jest w dowolnym z powyższych środków dezynfekcyjnych. Ekspozycja jest również wymieniona powyżej. Po dezynfekcji produkty myje się kolejno w dwóch porcjach sterylnej wody, następnie suszy i przechowuje w warunkach aseptycznych.

Notatka. W przypadku części metalowych z powłokami niklowymi i chromowanymi wyklucza się dezynfekcję roztworem dezoxonu, ponieważ roztwór ten powoduje korozję metali

SOP (standardowa procedura operacyjna) zapewniają pracownikom medycznym pisemne instrukcje krok po kroku i jasne algorytmy wdrożenia. Opracowany podręcznik uwzględnia ramy regulacyjne, specyfikę obszaru zastosowania i wymagania dotyczące procedury.

Zamiar: Zapobieganie zakażeniom szpitalnym, powikłaniom pooperacyjnym.

Sprzęt do dezynfekcji – urządzenia i instalacje przeznaczone do dezynfekcji, czyszczenia przed sterylizacją ( dalej – PSO), sterylizacja.

Sterylizacja to całkowite zniszczenie wszelkiego rodzaju patogenów, w tym zarodników, poprzez oddziaływanie na nie metodami fizycznymi, chemicznymi, termicznymi lub mieszanymi.

Zakres zastosowania: Regulamin dotyczy personelu pielęgniarskiego i młodszego personelu medycznego oddziałów klinicznych. Starsze pielęgniarki nadzorują proces sprzątania.

Wymagania:

  1. Środek dezynfekujący.
  2. Detergent.
  3. Instrukcje rozcieńczania tych produktów.
  4. Kontenery do przetwórstwa.
  5. Azopyram do kontroli jakości przetwarzania przed sterylizacją.
  6. Dzienniki kontroli sterylizacji i przed sterylizacją.

Dezynfekcja wysokiego stopnia wentylacji mechanicznej ( zwana dalej wentylacją mechaniczną), w połączeniu z czyszczeniem przed sterylizacją

Respirator należy oczyścić możliwie jak najszybciej, jednak nie później niż 30 minut po odłączeniu go od pacjenta.

Główne etapy przetwarzania sprzętu oddechowego to:

Etap 1. Demontaż urządzenia.

Etap 2. Oczyszczenie urządzenia + PSO (pojemnik nr 1).

Etap 3. Dezynfekcja wysokiego poziomu ( dalej – TLD) składany obwód urządzenia (zbiornik nr 2).

Etap 4. hardware urządzenia.

Etap 5. Suszenie, przechowywanie.

1. Demontaż podzespołów, demontaż węży, elementów łączących, odłączenie nawilżacza, syfonu (woda z nawilżacza i syfonu jest dezynfekowana). Obwód oddechowy urządzeń to wydrążony układ gazoprzewodzący będący w bliskim kontakcie z powietrzem wydychanym i wdychanym przez pacjenta, maski twarzowe, rurki dotchawicze, kaniule tracheostomijne, ustniki, łączniki, adaptery, trójniki, wszelkiego rodzaju rurki łączące, itp.

Worek oddechowy również podlega dezynfekcji i PSO.

2. Wszystkie zdemontowane komponenty, wyroby medyczne ( dalej – IMN) myjemy w pojemniku nr 1 działającym roztworem środka dezynfekującego (co najmniej 3 minuty). Do mycia można używać gazików bawełnianych.

3. Wyroby medyczne zanurza się w pojemniku nr 2 z działającym roztworem środka dezynfekcyjnego do TLD, wypełniając kanały i ubytki. Odłączane produkty są zanurzane i demontowane, narzędzia z częściami blokującymi są moczone w pozycji otwartej, wykonując kilka ruchów roboczych za pomocą tych narzędzi w roztworze.

Objętość roztworu do zabiegu musi być wystarczająca do zapewnienia całkowitego zanurzenia wyrobu medycznego, a objętość roztworu nad produktami musi wynosić co najmniej 1 cm.

Narzędzia i poszczególne części sprzętu stosowane w praktyce anestezjologicznej poddawane są sterylizacji. Czasami jednak trzeba mieć do czynienia z materiałami i instrumentami, których nie zawsze da się wysterylizować ogólnie przyjętą metodą.

Najprostszą i najbardziej niezawodną metodą jest gotowanie lub autoklawowanie. Ale tutaj musimy stawić czoła wielu trudnościom. Faktem jest, że rurki i inne przedmioty gumowe przy takiej sterylizacji tracą elastyczność, elastyczność i szybko ulegają uszkodzeniu. Niektóre części aparatu są praktycznie niedostępne w obróbce.

W ostatnim czasie zaproponowano szereg metod zapewniających sterylność przedmiotów bez istotnego wpływu na ich jakość. Zostaną one omówione poniżej.

Dezynfekcja aparatu znieczulającego

Aparat do znieczulenia to wydrążony system przewodzący powietrze, który ma ścisły kontakt z drogami oddechowymi pacjenta. Jeśli urządzenie i narzędzia pomocnicze mające kontakt z pacjentem nie zostaną odpowiednio obrobione, infekcja może zostać przeniesiona na następnego pacjenta.

Dezynfekcję aparatu do znieczulenia należy rozpocząć od dokładnego oczyszczenia mechanicznego, które należy przeprowadzić bezpośrednio po zakończeniu znieczulenia. Gumowe części urządzenia, a także metalowe trójniki, adaptery i inne wyjmowane elementy należy dokładnie umyć pod bieżącą ciepłą wodą z mydłem. Jednocześnie nie zaleca się używania pędzli lub „kryz”, ponieważ bez wstępnego zagotowania same w sobie są źródłem dodatkowej infekcji. Dodatkowo w rurkach układu przewodzącego powietrze urządzenia resztki włosia szczotek i „kryz” mogą przedostać się do dróg oddechowych pacjenta.

Po umyciu i wypłukaniu węże gumowe, worki, a także metalowe elementy łączące (trójniki, rurki kątowe, adaptery) poddawane są dezynfekcji chemicznej. Środki dezynfekcyjne muszą spełniać szereg wymagań:

  1. dać niezawodny efekt;
  2. nie mają szkodliwego wpływu na błonę śluzową dróg oddechowych;
  3. nie niszczyć części dezynfekcyjnych;
  4. być dostępne i łatwe w użyciu.

Jednym z najlepszych środków dezynfekcyjnych jest alkohol etylowy. Zanurzenie powyższych części na 20-30 minut w alkoholu etylowym o temperaturze 70° daje dobry efekt dezynfekcyjny. Po użyciu alkohol można przechowywać w celu ponownej dezynfekcji.

Powstaje pytanie, jak często należy dezynfekować aparaty i instrumenty anestezjologiczne?

Części gumowe i elementy łączące urządzenia należy zdezynfekować, zwłaszcza po znieczuleniu pacjenta cierpiącego na zakaźną chorobę płuc. Po pacjentach ze zdrowym układem oddechowym dopuszcza się okresową dezynfekcję aparatu do znieczulenia (około raz w tygodniu). Natomiast czyszczenie mechaniczne – mycie części i elementów urządzeń – należy wykonywać po każdym znieczuleniu.

Jeżeli operacja była wykonywana z powodu bąblowca płucnego lub u znieczulanej osoby występowała aktywna postać gruźlicy, to po umyciu ciepłą wodą z mydłem rurki dotchawicze, maski, adaptery, worek i inne narzędzia pomocnicze należy potraktować formaldehydem, a następnie gotować przez 3 minuty.

Sterylizacja rurek intubacyjnych

Po użyciu rurki dotchawicze odłącza się od adaptera i dokładnie myje gorącą wodą z mydłem, zwracając szczególną uwagę na czystość powierzchni wewnętrznej. Do czyszczenia wygodniej jest użyć specjalnej szczotki lub trzpienia drucianego. W pętelkę na końcu mandryny wkłada się gazik zwilżony ciepłą wodą i namydlony mydłem. Mandrynę wprowadza się do rurki, dzięki czemu jej wewnętrzna powierzchnia jest dobrze oczyszczona ze śluzu, krwi, ropy itp.

Po umyciu rurkę dokładnie płucze się pod silnym strumieniem wody i wyciera do sucha gazą nasączoną eterem.

Sterylizację rurek dotchawiczych można przeprowadzić jedną z wielu istniejących metod – gotowanie, przechowywanie w alkoholu o różnym stężeniu, w roztworze sublimatu, furaceliny, rivanolu itp. Niezależnie jednak od tego, która z tych metod zostanie zastosowana, na końcu znieczuleniu rurkę dokładnie myje się, jak wspomniano powyżej, a następnie sterylizuje.

Gotowanie jest najbardziej niezawodną metodą sterylizacji, ma jednak wpływ na jakość gumy. Rurki stają się mniej elastyczne i ulegają deformacji.

Jedna z metod sterylizacji jest następująca: po dokładnym wypłukaniu rurkę zanurza się we wrzącej wodzie na 4-5 minut lub umieszcza w 70° alkoholu na 2 godziny.

Według innej metody rurki po ekstubacji myje się również pod bieżącą wodą i mydłem, zarówno wewnątrz, jak i na zewnątrz, a następnie suszy i przeciera roztworem sublimatu (1:5000) lub 2% roztworem chloraminy. Następnie probówki płucze się wodą i przeciera alkoholem 96°.

W praktyce probówki wykorzystuje się następnego dnia, dlatego część z nich przed użyciem przechowuje się w stanie suchym w sterylnym pojemniku lub w roztworze furaceliny (5:5000). Lepiej jest przechowywać probówki w okrągłym szklanym słoju, który zachowuje niezbędną krzywiznę.

Przed użyciem, po sprawdzeniu światła rurki i integralności mankietu, rurkę należy kilkakrotnie przetrzeć gazikiem zwilżonym alkoholem 70° i pozostawić do wyschnięcia. Przed intubacją zaleca się nasmarowanie tchawiczego końca rurki 1% maścią dikainową na glicerynie lub po prostu czystą gliceryną w celu ułatwienia wprowadzenia. Zaletą gliceryny jest to, że łatwo ją zmywa się wodą. W tym przypadku rura nie ulega uszkodzeniu.

Kanały powietrzne, przekładki dentystyczne, rurki narożnikowe, narzędzia metalowe itp. sterylizowane przez gotowanie lub autoklawowanie. Wcześniej wszystkie te przedmioty są również dokładnie myte pod bieżącą gorącą wodą z mydłem. Następnie są suszone i przecierane alkoholem 70″. Sterylizacja w wysokiej temperaturze nie ma wpływu na jakość tych przedmiotów.

Sterylizacja laryngoskopu stawia trudniejsze zadanie. Można to zrobić na różne sposoby. Jeśli żarówkę i przewody elektryczne laryngoskopu można wyjąć, należy je usunąć, a laryngoskop gotuje się. Profesor Meshalkin sugeruje umycie ostrza laryngoskopu w bieżącym 95% roztworze amoniaku, a następnie przetarcie go alkoholem o temperaturze 70°.

Innym sposobem sterylizacji laryngoskopu jest przetarcie części oświetleniowych najpierw wilgotną, dobrze wyciśniętą gazą, a następnie sublimacją (1:5000) lub 2% roztworem chloraminy, aby uniknąć uszkodzenia, a następnie potraktowanie ich alkoholem 96° . Po umyciu łyżki laryngoskopu i rurki oskrzeli zanurza się w roztworze furaceliny (1:5000). Przed użyciem przetrzeć sterylną szmatką.

Nebulizator to specjalne urządzenie medyczne, które pozwala zamienić roztwory lecznicze w parę. Stosuje się go do inhalacji, gdyż para łatwiej przedostaje się do dróg oddechowych i płuc. Nebulizatory są zwykle zalecane dla małych dzieci, osób chorych na astmę lub osób z uszkodzeniami układu oddechowego. Nebulizator należy zawsze utrzymywać w czystości. Jest to bardzo ważne, ponieważ jeśli jest brudne, wszystkie znajdujące się na nim zarazki mogą przedostać się do płuc i spowodować infekcję. Zamów u nas ogólne hipoalergiczne sprzątanie mieszkania.

Metoda 1 - szybkie czyszczenie nebulizatora

Należy wykonać poniższe czynności po każdym użyciu inhalatora.

  • Pierwszym krokiem jest dokładne umycie rąk mydłem lub roztworem na bazie alkoholu. Ponieważ metoda szybkiego czyszczenia nie wymaga użycia mydła, musimy zabić wszystkie bakterie na dłoniach, aby nie przenieść ich do inhalatora.
  • Jeśli to możliwe, rozłóż nebulizator na części. Większość modeli podzielona jest na 3 części – maskę lub ustnik, rurkę łączącą maskę z jednostką główną oraz jednostkę dostarczającą powietrze pod ciśnieniem. Odłącz wszystkie części od siebie. Nie trzeba czyścić jednostki głównej, wystarczy wyczyścić maskę i fajkę. Chociaż maska ​​wystarczy.
  • Umyj maskę lub ustnik pod ciepłą wodą. Pamiętaj o przepłukaniu wszystkich trójników. Włóż część pod wodę i trzymaj pod nią przez pół minuty do minuty. Upewnij się, że wszystkie części zostały umyte.
  • Po umyciu ustnika (lub maski) strząśnij nadmiar wilgoci i połóż go na czystym ręczniku. Pozwól wodzie wyschnąć naturalnie. Może to potrwać od około 20 minut do godziny.
  • Po wyschnięciu wszystkich części złóż nebulizator do stanu suchego.

  • W przypadku niektórych modeli nebulizatorów konieczna jest codzienna dezynfekcja ustnika mydłem. Aby się o tym przekonać, przed zakupem skonsultuj się ze sprzedawcą. Dezynfekcję należy przeprowadzić mydłem.

Metoda 2 - głębokie czyszczenie nebulizatora

Poniższe kroki należy wykonywać co 3-7 dni.


Poradnik

Aby zapewnić wysokiej jakości dezynfekcję pomieszczeń, zamów usługi sprzątania w naszej firmie sprzątającej.

Przed rozpoczęciem czyszczenia należy zapoznać się z instrukcją obsługi inhalatora.

Okresowo należy wymienić filtr powietrza w jednostce głównej. Dowiedz się, ile czasu zajmuje wykonanie tej czynności.

Jeśli nie można rozmontować części inhalatora, nie należy używać siły. Zniszczysz tylko nebulizator.

Ostrzeżenia

Nie ma potrzeby używania zbyt gorącej wody. Gorąca woda może nie tylko spowodować oparzenia, ale także wypaczyć części inhalatora.

Co o tym myślisz? Co jeszcze możesz dodać do powyższego?


^ 5. Czyszczenie i dezynfekcja sprzętu anestezjologicznie-oddechowego (NDA)

5.1. Urządzenia anestezjologicznie-oddechowe, anestezjologiczne i urządzenia do sztucznej wentylacji płuc, zarówno nowe, jak i po każdym użyciu, poddawane są obróbce (myciu i dezynfekcji).

5.2. W zależności od cech konstrukcyjnych urządzenia anestezjologicznie-oddechowe, anestezjologiczne i urządzenia do sztucznej wentylacji płuc są przetwarzane na dwa sposoby:

A) blok po bloku,

B) zmontowane

5.3. Podczas przeprowadzania znieczulenia i sztucznej wentylacji płuc (ALV) obowiązkowe jest stosowanie filtrów bakteryjno-wirusowych, w praktyce ftyzjologicznej należy stosować filtry Hepa;

5.4. Podczas korzystania z nowoczesnego sprzętu anestezjologicznie-oddechowego dezynfekcję i sterylizację przeprowadza się zgodnie z instrukcjami dla tego sprzętu.

5.5. Warunkiem niezawodnej dezynfekcji sprzętu anestezjologicznie-oddechowego i anestezjologicznego oraz respiratorów jest mycie i dezynfekcja poszczególnych elementów i zespołów układu oddechowego oraz części wchodzących w skład urządzenia.

5.4 Obydwa nowe urządzenia poddawane są czyszczeniu w celu oczyszczenia z kurzu, substancji wiążących, pylących oraz urządzenia po ich użyciu w celu odkażenia i usunięcia substancji pirogennych, kawałków tkanek i innych pozostałości organicznych.

5.5. Proces mycia (blok po bloku) składa się z szeregu kolejnych etapów.

5.5.1. Przygotowanie - demontaż podzespołów, demontaż węży, elementów łączących, pokryw skrzynek zaworowych, odłączenie i opróżnienie kolektorów kondensatu itp.

5.5.2. Dezynfekcję części przeprowadza się w 3% nadtlenku wodoru przez 60 minut przy pełnym zanurzeniu lub innym środku dezynfekcyjnym o odpowiednim stężeniu, zgodnie z instrukcją, z obowiązkowym wypełnieniem ubytków obrabianych części.

5.5.3. Kolejne mycie przeprowadza się pod bieżącą wodą możliwie jak najszybciej po dezynfekcji. Dotyczy to zwłaszcza elementów łączących i rurek, aby zapobiec zasychaniu na nich wydzielin, wysięku, krwi itp.

5.5.4. Części myje się wacikami z gazy bawełnianej w roztworze myjącym. Do czyszczenia i mycia nie należy używać ostrych przedmiotów, szczotek ani kryz, gdyż istnieje ryzyko pozostawienia włosia szczotek (kryzy) w dyszach i przedostania się ich do dróg oddechowych. Gaziki stosuje się do jednorazowego przemywania.

5.5.5. Umyte części płucze się pod bieżącą wodą przez co najmniej 3 minuty.

5.5.6. Do oznaczania pozostałości dodatków alkalicznych stosuje się próbę fenoloftaleinową. W przypadku wykrycia pozostałości alkaliów (test pozytywny) całą grupę produktów, z których pobrano produkty do kontroli, należy poddać ponownemu przetworzeniu do czasu uzyskania wyniku negatywnego.

5.5.8. Sprzęt anestezjologicznie-oddechowy sterylizuje się poprzez zanurzenie w 6% nadtlenku wodoru z ekspozycją 360 minut lub innym środkiem dezynfekującym, zgodnie z instrukcją. Wszystkie etapy obróbki przedsterylizacyjnej i sterylizacji przeprowadzane są w jednostce operacyjnej.

5.5.9. Po sterylizacji elementy i części suszy się sterylnym prześcieradłem, następnie przenosi na inny sterylny prześcieradło i przechowuje przez 24 godziny.

5.6. Podczas korzystania z nowoczesnego sprzętu anestezjologicznie-oddechowego dezynfekcję i sterylizację przeprowadza się zgodnie z instrukcjami dla tego sprzętu.

^ 6. LECZENIE RĄK CHIRURGA

6.1. Dezynfekcji rąk dokonują wszystkie osoby biorące udział w zabiegach chirurgicznych, porodach i cewnikowaniu dużych naczyń. Przetwarzanie odbywa się w dwóch etapach:

Etap I – mycie rąk wodą z mydłem przez dwie minuty, a następnie osuszanie sterylnym ręcznikiem (serwetka);

Etap II – leczenie dłoni, nadgarstków i przedramion środkiem antyseptycznym, jednym z leków antyseptycznych, zgodnie z instrukcją stosowania w placówkach służby zdrowia w Uzbekistanie.

6.2. Sterylne rękawiczki zakłada się natychmiast po całkowitym wyschnięciu środka antyseptycznego na skórze dłoni.

6.3. Chusteczki do mycia rąk są sterylizowane w autoklawie, a paznokcie traktowane specjalnym jednorazowym sztyftem.

6.4. Ilość środka antyseptycznego potrzebnego do zabiegu, częstotliwość zabiegu oraz czas jego trwania określają zalecenia zawarte w wytycznych/instrukcji stosowania danego produktu.


    1. Do chirurgicznego leczenia dłoni stosuje się leki, m.in. preparat „S-4”.
6.6. Recepturę „C-4” przygotowuje się z wymaganej ilości nadtlenku wodoru i kwasu mrówkowego, które miesza się w szklanym naczyniu, które umieszcza się w zimnej wodzie na 1-1,5 godziny i okresowo wstrząsa.


^ Ilość składników do przygotowania przepisu C-4


Ilość składników

Ilość roztworu roboczego

30-33% nadtlenku

Kwas mrówkowy

Woda (l)

wodór (ml)

100% (ml)

85% (ml)

1
17,1
6,9
8,1
do 1

2
34,2
13,8
16,2
do 2

5
85,5
34,5
40,5
do 5

10
171,0
69,0
81,0
do 10

Roztwór przygotowuje się i stosuje wyłącznie w dniu zabiegu.

6.7. Roztwór przechowuje się w szklanym pojemniku nie dłużej niż jeden dzień w chłodnym miejscu z hermetycznym korkiem.

6.8. Do leczenia rąk chirurgów stosuje się również 0,5% roztwór alkoholu biglukonianu chlorheksydyny (lek rozcieńcza się w 70% alkoholu w stosunku 1:40). Zabieg na dłonie chlorheksydyną przeprowadza się za pomocą wacika przez 5 minut. Środek antyseptyczny nakładamy wacikiem na całą powierzchnię dłoni, przedramion aż do łokci i energicznie wcieramy najpierw prawą, następnie lewą ręką aż do łokci przez co najmniej 2 minuty. Podczas ponownego przetwarzania stosuje się nowy, sterylny wacik.

6.9. Do leczenia rąk stosuje się również 1% roztwór degminy lub 0,1% roztwór jodoperonu-jodoforu, leczenie prowadzi się w misce przez 4 minuty, a także inne leki zgodnie z instrukcją.

^ 7. LECZENIE POLA OPERACYJNEGO

7.1. Podczas leczenia pola operacyjnego pacjenta przed operacją i innymi manipulacjami związanymi z uszkodzeniem integralności skóry i błon śluzowych (nakłucie różnych ubytków, biopsje) należy preferować antyseptyki skóry zawierające alkohol z barwnikiem.

7.2. Nie należy usuwać włosów przed zabiegiem, chyba że włosy w pobliżu miejsca zabiegu chirurgicznego lub wokół niego będą przeszkadzać w zabiegu. Jeżeli zachodzi konieczność ich usunięcia, należy to zrobić bezpośrednio przed zabiegiem, stosując depilatory (kremy, żele) lub inne metody, które nie podrażniają skóry. W nagłych przypadkach dozwolone jest strzyżenie i golenie włosów.

7.3. Przed zastosowaniem środka antyseptycznego należy dokładnie umyć i oczyścić skórę pola operacyjnego oraz otaczające ją obszary, aby usunąć widoczne zanieczyszczenia.

7.4. Zabieg pola operacyjnego przeprowadza się poprzez przetarcie osobnymi sterylnymi serwetkami z gazy zwilżonymi środkiem antyseptycznym do skóry: alkoholem etylowym 96 stopni, jodonianem, jodopironem, roztworem diglukonianu chlorheksydyny lub innymi lekami stosowanymi w tym celu, w czasie dezynfekcji zalecanym przez wytyczne/ instrukcje użytkowania konkretnego produktu.

7,5. Podczas leczenia nieuszkodzonej skóry przed zabiegiem należy nałożyć środek antyseptyczny na skórę koncentrycznymi okręgami od środka do obwodu, a w przypadku ropnej rany od obwodu do środka za pomocą sterylnych wacików.

7.6. Przygotowany obszar powinien być wystarczająco duży, aby umożliwić kontynuację nacięcia lub wykonanie nowych nacięć w celu założenia drenów, jeśli zajdzie taka potrzeba.

7.7. Roztwory robocze jodonianu przygotowuje się ex tempore, rozcieńczając pierwotny roztwór 5-krotnie przegotowaną lub sterylną wodą (w stosunku 1:5).

7.8. Do izolowania skóry pola operacyjnego stosuje się sterylne prześcieradła, ręczniki i serwetki. Do nacięcia skóry można również zastosować specjalnie przyciętą folię chirurgiczną z powłoką antybakteryjną.

^ 8. TRYB SANITARNO-HIGIENICZNY W SALI DLA PACJENTÓW Z ZAKAŻENIEM BEZTLENOWYM

8.1.

Źródłem zakażenia są pacjenci ze zgorzelą gazową w dowolnej postaci: rozedmowej, obrzękowo-toksycznej, mieszanej i gazowo-ropnej.

8.2.

Czynniki wywołujące zgorzel gazową należą do rodzaju patogennych Clostridia - beztlenowych prątków przenoszących zarodniki. Z reguły zespół drobnoustrojów może składać się z patogennych Clostridia lub mieszaniny patogennych i nisko patogennych Clostridia, a także mieszaniny Clostridia z bakteriami tlenowymi: gronkowce, Escherichia coli, Proteus.

8.3.

Główną drogą przenoszenia infekcji jest kontakt. Do zakażenia może dojść w wyniku kontaktu zgorzel gazową przez uszkodzoną skórę lub błony śluzowe z ziemią, brudną bielizną, ubraniem, podczas stosowania niedostatecznie wysterylizowanych narzędzi, strzykawek, igieł, szwów i materiałów opatrunkowych, a także przez nieleczone ręce personelu medycznego.

8.7. Przed przyjęciem i po wypisaniu pacjenta łóżko, stolik nocny, stojak na basen (jeśli występuje) przeciera się szmatką obficie zwilżoną 6% roztworem nadtlenku wodoru z 0,5% detergentem. Łóżko składa się z pościeli, która została poddana zabiegowi dezynfekcji komorowej zgodnie z reżimem dla form zarodnikowych bakterii.

8.8.

Po użyciu naczynia są oczyszczane z resztek jedzenia, moczone w 2% roztworze sody i gotowane przez 20 minut, następnie myte pod bieżącą wodą i przechowywane w zamkniętej szafce.

8.9.

Oddziały sprzątane są co najmniej 2 razy dziennie metodą mokrą przy użyciu 6% roztworu nadtlenku wodoru z 0,5% detergentem.

8.10. Materiały czyszczące (wiadra, miski, szmaty itp.) są oznakowane i używane wyłącznie zgodnie z ich przeznaczeniem. Po użyciu poddaje się je autoklawowaniu przy 2 kgf/cm2 (132°C) przez 20 minut.

8.11. Chirurg i pielęgniarka zabiegowa zakładają maskę, fartuch i ochraniacze na buty przed wejściem do przebieralni. Podczas operacji lub opatrunku zakłada się fartuch z ceraty, który po każdym zabiegu lub opatrunku przeciera się szmatką nasączoną obficie 6% roztworem nadtlenku wodoru z 0,5% detergentem.

8.13. Czyszczenie sali operacyjnej i garderoby odbywa się metodą mokrą co najmniej 2 razy dziennie przy użyciu 6% roztworu nadtlenku wodoru z 0,5% detergentem. Podczas rutynowego czyszczenia należy używać środków ochrony osobistej.

8.14. Podczas sesji hiperbarii tlenowej pacjent otrzymuje indywidualną pościel w postaci małego materacyka i zagłówka. Jeśli nie można spełnić tego wymogu, ściółka jest osłonięta ceratą lub folią. Po sesji należy zmienić pokrycie i przetrzeć pościel szmatką zawierającą roztwór środka dezynfekującego.

8.17. Po zabiegu lub opatrunku wszystkie instrumenty medyczne zanurza się w 6% roztworze nadtlenku wodoru z 0,5% detergentem na 60 minut lub gotuje przez 20 minut od punktu wrzenia.

^ 9. TRYB SANITARNO-HIGIENICZNY Gabinetów Chirurgicznych W Poliklinikach

9.1. Kierownik gabinetu chirurgicznego odpowiada za przestrzeganie w gabinecie reżimu sanitarnego, higienicznego i przeciwepidemicznego.

9.2. Przed przystąpieniem do pracy personel medyczny na salach operacyjnych przechodzi badania lekarskie zgodnie z obowiązującym dokumentem regulacyjnym.

9.3. Personel medyczny z chorobami zapalnymi lub krostkowymi, złym samopoczuciem, gorączką, ostrymi chorobami układu oddechowego i innymi ostrymi objawami choroby nie jest dopuszczony do pracy.

9.4. Cały personel pracujący w gabinecie chirurgicznym musi być zarejestrowany w przychodni w celu szybkiego wykrywania chorób nosogardzieli, skóry i zębów próchnicowych.

9,5.

Raz w roku zastępca naczelnego lekarza kliniki organizuje badanie personelu chirurgicznego w kierunku markerów wirusowego zapalenia wątroby typu B i C.

9.6.

Na sali operacyjnej powinny znajdować się 2 garderoby:

Jałowy;

Septyczny.

9.7. Dla każdego pacjenta stosowane są indywidualne zestawy opatrunkowe/chirurgiczne.

9,8. Personel pracuje w specjalnym ubraniu; przed zabiegiem (opatrunkiem) musi zmienić fartuch oraz założyć specjalny fartuch i sterylne rękawiczki.

9,9. Przed operacją (opatrunkiem) chirurg i pielęgniarka muszą umyć ręce mydłem i sterylnymi szczoteczkami (lub sterylnymi serwetkami) przez 1 minutę, następnie zastosować środki antyseptyczne i założyć sterylne rękawiczki chirurgiczne. Paznokcie personelu muszą być krótko obcięte. Na rękach nie powinno być żadnej biżuterii.

9.10. Po każdym pacjencie należy umyć i przygotować ręce, stół operacyjny należy dwukrotnie przetrzeć środkami dezynfekcyjnymi.

9.13. Zabrania się przebywania personelu z innych gabinetów lub oddziałów kliniki na sali operacyjnej, a także przebywania personelu sal operacyjnych w innych pomieszczeniach, oddziałach kliniki lub na terenie wokół kliniki, w tym m.in. instalacje sanitarne i ogrodowe, na ulicy w specjalnej odzieży. W przypadku konieczności opuszczenia biur, personel ma obowiązek zdjąć specjalny sprzęt. odzież.

9.14.

W klinice przeznaczona jest przebieralnia na odzież wierzchnią dla pacjentów chirurgicznych, a w gabinecie specjalnie do tego przeznaczony wieszak.

9.15.

Wszystkie zapasy, wyposażenie, promocje. odzież i inne przedmioty znajdujące się w sali operacyjnej muszą być oznakowane i używane wyłącznie zgodnie z ich przeznaczeniem.

9.16. Sala operacyjna sprzątana jest rutynowo 3 razy dziennie, w tym 1 raz przy użyciu środków dezynfekcyjnych.

^ 9.17. Sprzątanie generalne odbywa się raz w tygodniu zgodnie z przym. 3 niniejszych zasad sanitarnych.

9.18. Raz na kwartał laboratorium terenowego Centralnego Państwowego Centrum Epidemiologii Sanitarnej przeprowadza badania bakteriologiczne obiektów środowiskowych pod kątem skażenia bakteryjnego oraz sterylności narzędzi chirurgicznych i opatrunków.

10. Rozliczanie i rejestracja zakażeń szpitalnych (HAI)

w szpitalach chirurgicznych (oddziałach)

10.1. Współczesne zakażenia szpitalne w szpitalach (oddziałach) chirurgicznych wywoływane są przez różne mikroorganizmy i klinicznie objawiają się głównie zespołem ropienia i zmianami septycznymi.

W zależności od umiejscowienia patogenu, jego uwolnienie z organizmu pacjenta lub nosiciela następuje poprzez różne narządy i tkanki (drogi oddechowe, przewód pokarmowy, układ moczowo-płciowy itp.). 10.2. Podczas operacji obserwuje się następujące rodzaje infekcji: A)

powierzchowne zakażenie nacięcia

następuje nie później niż 30 dni po zabiegu i obejmuje wyłącznie skórę i tkankę podskórną w okolicy nacięcia; u pacjenta występuje jedno z poniższych:

Ropna wydzielina z powierzchownego nacięcia;

Izolacja mikroorganizmów z płynu lub tkanki uzyskanej aseptycznie przez nakłucie obszaru powierzchownego nacięcia lub z rany w obecności mikroskopijnych objawów ropnego zapalenia;

Występują co najmniej dwa z następujących objawów: ból lub tkliwość; ograniczony obrzęk; zaczerwienienie; lokalny wzrost temperatury. Diagnozę stawia chirurg lub inny lekarz prowadzący (ropienie rany pooperacyjnej i inne); następuje nie później niż 30 dni po zabiegu w przypadku braku implantu lub nie później niż rok w przypadku obecności implantu w miejscu zabiegu i obejmuje głęboką tkankę miękką (np. warstwę powięziową i mięśniową) w obszarze nacięcia; u pacjenta występuje co najmniej jedno z poniższych:

Ropna wydzielina z głębokości nacięcia w miejscu interwencji chirurgicznej, ale nie z narządu/jamy;

Izolacja mikroorganizmów z płynu lub tkanki uzyskanej aseptycznie przez nakłucie głębokiego obszaru nacięcia lub z wymazu z głębi rany w obecności mikroskopijnych cech ropnego zapalenia;

Samoistne rozejście się rany lub celowe otwarcie rany przez chirurga, gdy u pacjenta występują następujące objawy przedmiotowe i podmiotowe: gorączka (> 37,5°C), miejscowy ból lub tkliwość;

Podczas bezpośredniego badania, podczas reoperacji, badania histologicznego lub rtg, w okolicy głębokiego nacięcia wykryto ropień lub inne oznaki infekcji.

Diagnozę stawia chirurg lub inny lekarz prowadzący (ropień, ropowica i inne);

W) infekcja jamy/narządu następuje nie później niż 30 dni po zabiegu w przypadku braku implantu lub nie później niż rok w przypadku obecności implantu w miejscu zabiegu chirurgicznego, obejmuje dowolną część ciała (na przykład narząd lub jamę) inną niż nacięcie obszar, który został otwarty lub manipulowany podczas operacji; u pacjenta występuje jedno z poniższych:

Ropna wydzielina z drenażu umieszczonego w narządzie/jamie poprzez specjalne nacięcie;

Izolacja mikroorganizmów z płynu lub tkanki pobranej w sposób aseptyczny z narządu/jamy;

Stan gorączkowy;

Podczas bezpośredniego badania, podczas reoperacji, badania histologicznego lub radiologicznego stwierdza się ropień lub inne objawy zakażenia obejmującego narząd/jamę.

Diagnozę stawia chirurg lub inny lekarz prowadzący (zapalenie otrzewnej, zapalenie kości i szpiku, zapalenie płuc, odmiedniczkowe zapalenie nerek, zapalenie śródpiersia, zapalenie błony śluzowej macicy i inne, które wystąpiły po operacji na odpowiednim narządzie).

10.3. Do szpitalnych zakażeń pooperacyjnych zalicza się choroby, które pojawiają się w ciągu 30 dni od zabiegu, a w przypadku obecności implantu w miejscu zabiegu – do roku.

10.4. Ponieważ zakażenia szpitalne rozwijają się i są wykrywane nie tylko podczas pobytu pacjenta w szpitalu, ale także po wypisaniu lub przeniesieniu do innego szpitala i charakteryzują się różnorodnymi objawami klinicznymi, organizacja gromadzenia informacji odbywa się nie tylko w szpitalach, ale także w innych placówkach służby zdrowia.

10,5. Epidemiolog placówki medycznej wraz z kierownikami jednostek strukturalnych aktywnie wykrywa zakażenia szpitalne poprzez obserwację prospektywną, analizę operacyjną i retrospektywną.

10.6. Ogólne wymagania dotyczące zabezpieczenia mikrobiologicznego nadzoru epidemiologicznego:

Wyniki badań mikrobiologicznych są niezbędne do skutecznego nadzoru epidemiologicznego.

W prowadzeniu badań klinicznych i sanitarno-bakteriologicznych powinny przeważać badania wskazań klinicznych, które powinny być prowadzone przez laboratoria mikrobiologiczne zakładów opieki zdrowotnej, mające na celu rozszyfrowanie etiologii zakażeń szpitalnych i ustalenie taktyki leczenia.

Zakres badań sanitarno-bakteriologicznych wyznacza konieczność epidemiologiczna.

10.7. Wystąpienie lub podejrzenie zakażeń szpitalnych u pacjentów i personelu jest wskazaniem do badań mikrobiologicznych.

10.8. Materiał należy pobrać bezpośrednio z ogniska patologicznego przed rozpoczęciem terapii przeciwbakteryjnej, a także w trakcie operacji procesów ropnych.

10.9. Pobieranie i transport materiału klinicznego do badań mikrobiologicznych odbywa się zgodnie z techniką gromadzenia i transportu biomateriałów do laboratoriów mikrobiologicznych.

10.10. W przypadku powolnych ran ropno-zapalnych, przetok i innych objawów zaleca się zbadanie pacjentów pod kątem promieniowców, drożdżaków i grzybów pleśniowych.

10.11. Do próbki klinicznej należy dołączyć skierowanie zawierające informacje: rodzaj materiału, nazwisko, imię, patronimię i wiek pacjenta, nazwę oddziału, numer historii choroby, rozpoznanie choroby, datę i godzinę pobrania materiał, dane dotyczące wcześniej przeprowadzonej terapii przeciwbakteryjnej, podpis lekarza kierującego, materiał do analizy.

10.12. Laboratorium mikrobiologiczne dostarcza lekarzowi prowadzącemu i epidemiologowi informacji do dalszej analizy:


  • liczba próbek klinicznych przesłanych do badań z każdego oddziału;

  • liczba wyizolowanych i zidentyfikowanych mikroorganizmów, w tym grzybów (odrębnie dla każdego gatunku);

  • liczba izolowanych asocjacji drobnoustrojów;

  • liczba mikroorganizmów zbadanych pod kątem wrażliwości na każdy antybiotyk;

  • wrażliwość izolowanych mikroorganizmów na antybiotyki i inne środki przeciwdrobnoustrojowe.
10.13. Należy zwrócić szczególną uwagę na gronkowce oporne na metycylinę (oksacylinę), enterokoki oporne na wankomycynę i mikroorganizmy wielolekooporne w celu podjęcia ukierunkowanych działań terapeutycznych, zapobiegawczych i przeciwepidemicznych.

10.14. Podczas badania ognisk choroby, aby skutecznie zidentyfikować źródła zakażenia, drogi i czynniki przenoszenia, przeprowadza się wewnątrzgatunkowe typowanie mikroorganizmów izolowanych od pacjentów, personelu medycznego i obiektów środowiskowych.

10.15. Badania laboratoryjne obiektów środowiskowych w zakładach opieki zdrowotnej prowadzone są zgodnie z przepisami sanitarnymi dotyczącymi organizacji i prowadzenia kontroli produkcji nad przestrzeganiem środków sanitarno-higienicznych, zapobiegawczych i przeciwepidemicznych, zgodnie z opracowanym planem kontroli produkcji, ze szczególnym uwzględnieniem monitorowania sterylność narzędzi, roztworów do iniekcji, opatrunków i szwów.

10.16. Analiza operacyjna i retrospektywna polega na badaniu częstości występowania zakażeń szpitalnych pod kątem lokalizacji procesu patologicznego, etiologii i czasu ich rozwoju.

10.17. Analizę operacyjną (bieżącą) zachorowalności na zakażenia szpitalne przeprowadza się na podstawie codziennych zapisów rozpoznań pierwotnych.

10.18. Podczas operacyjnej analizy zachorowalności ocenia się aktualną sytuację epidemiologiczną i rozstrzyga się kwestię dobrostanu lub powikłań w ujęciu epidemiologicznym, adekwatność podjętych działań lub potrzebę ich korekty.

10.19. Analizę częstości występowania zakażeń szpitalnych przeprowadza się biorąc pod uwagę:


  • czas wystąpienia choroby po operacji;

  • miejsce operacji (numer sali operacyjnej);

  • czas trwania operacji;

  • czas, jaki upłynął od przyjęcia do zabiegu;

  • długość pobytu w szpitalu;

  • profilaktyczne stosowanie antybiotyków;

  • rodzaj czystości operacji (klasa rany);

  • ocena ciężkości stanu pacjenta.
10.20. Retrospektywna analiza częstości występowania zakażeń szpitalnych obejmuje:

  • analiza długoterminowej dynamiki zachorowań z określeniem trendów (wzrost, spadek, stabilizacja) oraz tempa wzrostu lub spadku;

  • analiza rocznych i miesięcznych poziomów zachorowalności;

  • charakterystyka porównawcza zachorowalności według oddziałów;

  • badanie struktury zachorowalności poprzez lokalizację procesu patologicznego i etiologii;

  • analiza interwencji chirurgicznych;

  • rozkład zachorowań ze względu na moment wystąpienia objawów klinicznych (podczas pobytu w szpitalu i po wypisaniu ze szpitala);

  • analiza danych dotyczących powstawania szczepów szpitalnych;

  • określenie udziału zachorowań ogniskowych w ogólnej strukturze zakażeń szpitalnych;

  • analiza śmiertelności (poprzez lokalizację procesu patologicznego i etiologii), poziomu umieralności oraz odsetka zgonów z powodu zakażeń szpitalnych.
10.21. Retrospektywna analiza częstości występowania zakażeń szpitalnych u pacjentów pozwala na poznanie poziomu tła zachorowalności, głównych źródeł zakażenia, głównych czynników przenoszenia i stanowi podstawę do opracowania działań profilaktycznych i przeciwepidemicznych adekwatnych do specyficznej sytuacji epidemiologicznej. sytuacji w danym szpitalu (oddziale).

10.22. Aby poprawnie porównać wskaźniki pooperacyjnych chorób zakaźnych, ich obliczenia przeprowadza się z uwzględnieniem głównych czynników ryzyka: rodzaju operacji, czasu trwania operacji, ciężkości stanu pacjenta. Nie zaleca się porównywania bezwzględnej liczby zakażeń szpitalnych, a także wskaźników intensywnych obliczonych dla 100 operacji bez uwzględnienia czynników ryzyka.

10.23. Retrospektywna analiza częstości występowania personelu medycznego pozwala określić zasięg źródeł zakażenia i podjąć działania mające na celu ograniczenie ich roli w przedostawaniu się do placówki medycznej i rozprzestrzenianiu się zakażeń szpitalnych.

10.24. W zależności od stopnia zanieczyszczenia rany podczas operacji wyróżnia się:


  • czyste rany (niezakażone rany chirurgiczne, bez oznak
zapalenie);

  • rany warunkowo czyste (rany chirurgiczne penetrujące drogi oddechowe, pokarmowego, narządów płciowych lub dróg moczowych przy braku nietypowej infekcji);

  • rany zanieczyszczone (skażone) (rany chirurgiczne ze znacznym naruszeniem technik sterylności lub ze znacznym wyciekiem zawartości z przewodu żołądkowo-jelitowego);

  • rany brudne (zakażone) (rany chirurgiczne, w których w planie chirurgicznym przed operacją znajdowały się mikroorganizmy wywołujące zakażenie pooperacyjne).
10.25. Ryzyko rozwoju infekcji szpitalnych w przypadku ran czystych wynosi 1–5%, w przypadku ran stosunkowo czystych – 3–11%, w przypadku ran zanieczyszczonych – 10–17%, a brudnych – ponad 25–27%.

10.26. Oprócz wskaźników intensywnej zachorowalności wyliczane są wskaźniki pozwalające określić wpływ szeregu czynników ryzyka (wskaźniki warstwowe) – częstość występowania zakażeń:

Dolne drogi oddechowe na 1000 osobodni sztucznej wentylacji płuc i ich struktura (u pacjentów poddawanych sztucznej wentylacji płucnej (ALV);

Przepływ krwi na 1000 pacjentodni cewnikowania naczyń i ich struktura (u pacjentów poddawanych cewnikowaniu naczyń).

Drogi moczowe na 1000 pacjentodni cewnikowania pęcherza moczowego i ich struktura (u pacjentów poddawanych cewnikowaniu pęcherza moczowego).

10.27. Aby zapobiec wystąpieniu ognisk zakażeń szpitalnych, dużą wagę przywiązuje się do ich identyfikacji i rejestrowania.

10.28. Choroby i powikłania podlegają ewidencji i rejestracji zgodnie z Międzynarodową Statystyczną Klasyfikacją Chorób, Urazów i Warunków mających wpływ na zdrowie, wydanie 10 (zwaną dalej ICD-10).

10.29. Pojedyncze przypadki lokalnych postaci GSI badane są przez epidemiologa zakładu opieki zdrowotnej, który ustala, przeprowadza i kontroluje w pełni realizację działań profilaktycznych i przeciwepidemicznych. W przypadku nieobecności epidemiologa szpitalnego dochodzenie prowadzi jego zastępca. lekarz naczelny zakładu opieki zdrowotnej do pracy lekarskiej. Ostre choroby zakaźne (salmonelloza, czerwonka, gorączka krwotoczna, szpitalne HBV i HCV itp.) oraz uogólnione formy GSI (posocznica, zapalenie kości i szpiku itp.) są prowadzone przez lekarza epidemiologa terytorialnego Centralnego Państwowego Centrum Epidemiologii Społecznej.

10.31. Specjalista, który stwierdził przypadek zakażenia szpitalnego, formułuje diagnozę zgodnie z Międzynarodową Statystyczną Klasyfikację Chorób, Urazów i Stanów mających wpływ na zdrowie, wydanie 10, i wpisuje ją do rejestru chorób zakaźnych.

^ Lista zarejestrowanych form nozologicznych
infekcje pooperacyjne


Nazwa choroby
Kod według ICD-10

wirusowe i bakteryjne zapalenie płuc

J12-J15

posocznica paciorkowcowa

A40

inna posocznica, w tym:

A41

posocznica

A41.8

gangrena gazowa

A48.0

bakteryjne zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych, zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych i zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych

G00, G04.2

zapalenie mózgu, zapalenie rdzenia kręgowego lub zapalenie mózgu i rdzenia, nieokreślone

G04.9

zapalenie żył i zakrzepowe zapalenie żył

180

ostre zapalenie otrzewnej

K65.0

zapalenie szpiku

M86

nieudana aborcja medyczna, powikłana infekcją dróg rodnych i narządów miednicy

O07.0

rozejście się brzegów rany chirurgicznej, gdzie indziej niesklasyfikowane

T81.3

zakażenie związane z zabiegiem, gdzie indziej niesklasyfikowane (surowica, nacieki itp.)

T81.4

zakażenie związane z protezą zastawki serca, innymi urządzeniami sercowymi i naczyniowymi, implantami i przeszczepami

T82.6,7

infekcje wywołane protezą,
implant, przeszczep w układzie moczowo-płciowym

T83,5,6

zakażenia wywołane endoprotezami, stabilizatorem wewnętrznym, protezami wewnętrznymi, implantami, przeszczepami

T84.5,6,7

infekcja amputowanego kikuta

T87.4

infekcja i reakcja zapalna wywołana innymi protezami wewnętrznymi, implantami i przeszczepami

T85.7

zakażenia związane z infuzją, transfuzją i zastrzykiem terapeutycznym

T80.2

ostre zapalenie pęcherza moczowego

N30.0

ropień cewki moczowej

N34.0

zakażenia dróg moczowych bez ustalonej lokalizacji

N39.0

inne choroby zakaźne, przenoszenie patogenów chorób zakaźnych, które powstały podczas pobytu w organizacji medycznej

są oznaczone kodami ICD-10 zgodnie z formą nozologiczną

10.32. W przypadku każdego wykrytego u pacjenta przypadku zakażenia szpitalnego wysyłane jest powiadomienie do placówki opieki zdrowotnej f. 058/у do terytorialnego Centrum Państwowego Nadzoru Sanitarno-Epidemiologicznego, zgodnie z ustaloną procedurą.

10.33. Za choroby grupowe należy uznać wystąpienie 3 lub więcej przypadków chorób szpitalnych związanych z jednym źródłem zakażenia i wspólnymi czynnikami przenoszenia. W sprawie wystąpienia chorób grupowych w zakładach opieki zdrowotnej terytorialne Centralne Państwowe Centrum Epidemiologii Sanitarnej przedkłada organizacjom wyższym, sprawującym państwowy nadzór sanitarno-epidemiologiczny, raport nadzwyczajny, zawierający wymagany zakres informacji.

10.34. Zakres działań przeciwepidemicznych w przypadku wystąpienia sytuacji ogniskowej ustala specjalista z Państwowego Centrum Higieny i Epidemiologii w trakcie dochodzenia epidemiologicznego.

10.35. Odpowiedzialność za aktualność i kompletność informacji o każdym przypadku zakażeń szpitalnych ponosi kierownik placówki medycznej.