zwierzęta laboratoryjne. Zwierzęta laboratoryjne, cele i metody ich wykorzystania w wirusologii Z materiałów dodatkowych

ZWIERZĘTA LABORATORYJNE


zwierzęta laboratoryjne zwierzęta hodowane specjalnie do badań medycznych, weterynaryjnych i biologicznych. do tradycyjnego Ł. obejmują białe myszy, białe szczury, różne rodzaje chomików, świnki morskie, króliki, koty, psy; szczury bawełniane, norniki, myszoskoczki, fretki, oposy, pancerniki, małpy, miniświnki, miniosiołki, torbacze, ryby, płazy itp. Istnieje grupa ptaków laboratoryjnych (kury, gołębie, przepiórki itp.). Z wyjątkiem Ł., do eksperymentów wykorzystuje się zwierzęta domowe, częściej owce i świnie. Producentami surowic odpornościowych i diagnostycznych są konie, osły, owce i króliki. W eksperymencie wykorzystuje się również wiele bezkręgowców (na przykład Drosophila), a także pierwotniaki.

Ł. kontrolowane przez wskaźniki genetyczne, ekologiczne, morfologiczne oraz ze względów zdrowotnych. Hodowane są w specjalnych szkółkach lub w wiwariach przy instytucjach naukowych. Nieliniowy Ł. musi mieć wysoki stopień heterozygotyczności. Im mniejsza jest zamknięta populacja hodowanych zwierząt nieliniowych, tym wyższy stopień wzrostu chowu wsobnego wśród nich. Homozygotyczne (wsobne, liniowe) zwierzęta hodowane na zasadzie ścisłego chowu wsobnego są coraz częściej wykorzystywane do badań (ryc. 1). Znanych jest około 670 linii myszy, 162 linii szczurów, 16 linii świnek morskich, 66 linii chomików, 4 linii myszoskoczków i 7 linii kurcząt. Każda linia ma swoje własne cechy w zestawie genów, wrażliwości na różne antygeny i czynniki stresowe. Zwierzęta liniowe są systematycznie monitorowane pod kątem homozygotyczności. Podczas hodowli Ł. uzyskać 5 miotów rocznie od myszy, średnio po 7 myszy w każdym miocie odpowiednio u szczurów 5 i 7, u świnek morskich 3 i 5, u królików 4 i 6. Pomieszczenia dla Ł.(wiwaria) powinny być bardzo higieniczne, przestronne, z 10 wymianami powietrza na godzinę i wilgotnością powietrza 5065%. Na 1 m2 powierzchni umieszcza się 65 dorosłych lub 240 młodych myszy, 20100 szczurów, 3040 chomików, 1518 świnek morskich, 34 króliki. W jednej klatce można trzymać nie więcej niż 15 myszy, 10 szczurów, 5 chomików i świnek morskich, 1 królika. Co najmniej 50% powierzchni wiwarium przeznaczone jest na pomieszczenia gospodarcze. Aby uniknąć wymiany czynników zakaźnych, zawartość różnych gatunków jest niedozwolona. Ł. w tym samym pokoju lub klatce. Myszy, szczury, świnki morskie i chomiki są trzymane głównie na plastikowych tackach w kształcie stożka z pokrywkami z siatki; króliki, psy, małpy i ptaki w metalowych klatkach. Tace i klatki umieszczane są na stojakach w 16 rzędach (ryc. 2), wyposażone w automatyczne poidła i podajniki lejowe, dokładnie myte i dezynfekowane środkami fizycznymi lub chemicznymi przed użyciem. Kąpiele myszy i szczurów są wymieniane co tydzień na czyste. Zdejmowanie z nich pościeli i pranie odbywa się w specjalnym pomieszczeniu wyposażonym w odpowiednie urządzenia lub pralki. karmiony Ł. koncentraty paszowe naturalne lub brykietowane według opracowanych norm dziennego zapotrzebowania. Brykietowana pasza jest umieszczana w karmnikach na kilka dni. Służy Ł. przeszkolony personel, który przeszedł badania lekarskie.

Ł. charakterystycznych jest wiele chorób zakaźnych: salmonelloza, listerioza, gronkowce, ospa, biegunka wirusowa, limfocytowe zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych, kokcydioza, robaczyce, zakażenia grzybicze, zmiany odkleszczowe itp. Istnieją utajeni nosiciele (zwłaszcza u szczurów) chorobotwórczych bakterii i wirusów, utajone formy chorób zakaźnych o mało zbadanej etiologii. Niektóre infekcje Ł. są zooantroponozy. Zapobieganie chorobom Ł. opiera się na ścisłym przestrzeganiu zasad sanitarno-higienicznych, maksymalnej dezynfekcji otoczenia (pomieszczeń, powietrza, sprzętu, paszy, ściółki itp.). Produkcja jest zorganizowana w niektórych krajach Ł. bez określonych czynników patogennych, tak zwane zwierzęta SPF (patrz). Rosnąca potrzeba Ł. dała początek nauce o Ł., który obejmuje genetykę, ekologię, morfologię, fizjologię, patologię i inne sekcje, a także specjalną hodowlę zwierząt laboratoryjnych. W wielu krajach (USA, Wielka Brytania, Niemcy, Francja, ZSRR itp.) istnieją odpowiednie ośrodki naukowe, których koordynacją zajmuje się Międzynarodowy Komitet ds. Ł.(YCLAS).

Literatura:
Bashenina N.V., Wytyczne dotyczące trzymania i hodowli nowych gatunków małych gryzoni w praktyce laboratoryjnej. M., 1975;
Zasady sanitarne urządzania, wyposażenia i utrzymania eksperymentalnych klinik biologicznych (wiwariów), M., 1973.



Słownik encyklopedyczny weterynaryjny. - M.: „Encyklopedia radziecka”. Redaktor naczelny V.P. Sziszkow. 1981 .

Zobacz, co „ZWIERZĘTA LABORATORYJNE” znajduje się w innych słownikach:

    zwierzęta laboratoryjne- patrz Zwierzęta laboratoryjne. (Źródło: Glosariusz terminów mikrobiologicznych) ... Słownik mikrobiologii

    ZWIERZĘTA LABORATORYJNE- ZWIERZĘTA LABORATORYJNE, zwierzęta służące w laboratoriach różnego typu do celów naukowych i praktycznych. Ł. mogą to być te, które są łatwe do zdobycia, dobrze utrzymane lub wyhodowane w warunkach laboratoryjnych, a ponadto odpowiednie we własnym ... ... Wielka encyklopedia medyczna

    zwierzęta laboratoryjne- zwierzęta wykorzystywane w eksperymencie naukowym lub eksperymencie, testach biologicznych, procesie edukacyjnym, a także w produkcji produktów biologicznych ... Oficjalna terminologia

    ZWIERZĘTA LABORATORYJNE- są używane z nauką. cel w biologii, medycynie, weterynarii, str. x ve. W zależności od zadań naukowych eksperyment wybierz L., naib, odpowiedni do danych celów. Uwzględnia to nie tylko biol. cechy widoku, które zapewniają prostotę i ... ...

    zwierzęta laboratoryjne- zwierzęta doświadczalne lub doświadczalne wykorzystywane w laboratoriach do celów naukowych i praktycznych. Ł. musi być zdrowy, posiadać określone cechy (np. podatność na badane infekcje, ... ... Wielka radziecka encyklopedia

    Wzór zwierząt- * Madeleine żywe * Modele zwierzęce zwierząt laboratoryjnych, które są wykorzystywane do badań naukowych, zwłaszcza medycznych, w celu badania ludzkich chorób dziedzicznych. Zajazd. temp. w medycynie eksperymentalnej stosuje się około 250 ... ... Genetyka. słownik encyklopedyczny

    ZWIERZĘTA W EKSPERYMENTACH- wykorzystywania zwierząt w badaniach biologicznych, fizjologicznych i medycznych, w testach toksyczności różnych produktów i preparatów, w różnych programach edukacyjnych itp. Zwierzęta są albo ubijane, a następnie badane... ... Encyklopedia Colliera

    Laboratorium zwierząt- (doświadczalne) heterogeniczne gatunki zwierząt wykorzystywane w laboratoriach do celów naukowych i stosowanych. Obecnie w medycynie eksperymentalnej wykorzystuje się około 250 gatunków kręgowców i bezkręgowców. Tradycyjne dla... Słownik mikrobiologii

    ZWIERZĄT- (Animalia), królestwo organizmów żywych, jeden z największych podziałów w systemie organicznym. pokój. Prawdopodobnie pochodzi ok. 1 1,5 miliarda lat temu w morzu w postaci komórek przypominających mikroskopijne. achlorofilne wiciowce ameboidalne. Ziemia F… Biologiczny słownik encyklopedyczny

    Zwierzęta w kosmosie- Eksperymenty, które miały ustalić, czy lot człowieka w kosmos jest możliwy, rozpoczęły się w ZSRR i USA w latach 40. i 50. XX wieku. Pierwszym etapem badań biokosmicznych były powtarzające się loty psów, małp i innych zwierząt w rakietach na wysokości… Encyklopedia newsowców

Książki

  • zwierzęta laboratoryjne. Podręcznik, Stekolnikow Anatolij Aleksandrowicz, Szczerbakow Grigorij Gawriłowicz, Jaszyn Anatolij Wiktorowicz, Podręcznik zawiera materiały dotyczące ważnych gałęzi weterynarii i zootechniki, dotyczących utrzymania, żywienia i chorób zwierząt laboratoryjnych. Jest on określony zgodnie z ogólnie przyjętą metodologią, odpowiadającą ... Kategoria: Weterynaria Seria: Podręczniki dla szkół wyższych. Literatura specjalna Wydawca:

Ze względu na to, że wirusy mogą rozmnażać się tylko w żywych komórkach, na najwcześniejszych etapach rozwoju wirusologii szeroko stosowano hodowlę wirusów w organizmach specjalnie hodowanych do badań zwierząt laboratoryjnych.

Zastosowanie: 1) wykrywanie wirusa w PM 2) pierwotna izolacja wirusa z PM 3) gromadzenie masy wirusowej 4) utrzymywanie wirusa w laboratorium w stanie aktywnym. 5) miareczkowanie wirusa 6) jako obiekt testowy w pH 6) otrzymywanie surowic hiperimmunizowanych. Wykorzystywane zwierzęta: myszy białe (wścieklizna, pryszczyca), szczury białe (świńska grypa, b. Aujeszky), świnki morskie (wścieklizna, pryszczyca, nosówka). Króliki (wścieklizna, śluzaki królika).

Wymagania dla zwierząt laboratoryjnych – zwierzę musi być podatne na tego wirusa; jego wiek ma ogromne znaczenie dla hodowli wielu wirusów. Większość wirusów namnaża się lepiej w organizmach młodych, a nawet nowonarodzonych zwierząt; standardową czułość uzyskuje się poprzez selekcję zwierząt w określonym wieku io identycznej wadze. Pod względem czułości największą standardowość mają tzw. zwierzęta liniowe, uzyskane w wyniku blisko spokrewnionego krzyżowania przez kilka pokoleń; zwierzęta laboratoryjne muszą być zdrowe. Zwierzęta wprowadzane do wiwarium laboratorium wirusologicznego muszą pochodzić z fermy wolnej od chorób zakaźnych. Przebywają w kwarantannie i pod obserwacją kliniczną. W obecności choroby są niszczone.

Zwierzęta umieszczane są tak, aby z jednej strony zapewnić funkcjonowanie wszystkich układów organizmu w granicach normy fizjologicznej, z drugiej strony wykluczyć wzajemną reinfekcję i rozprzestrzenianie się infekcji poza wiwarium. W przypadku zwierząt różnych gatunków stosuje się różne metody indywidualnego znakowania. W przypadku dużych zwierząt i kurcząt stosuje się metalowe zawieszki z wytłoczonym numerem. Przy wykorzystaniu małej grupy zwierząt w eksperymencie i przez krótki okres czasu można obciąć sierść ze znakami na grzbiecie, biodrach. Etykietę białych myszy, białych szczurów można przeprowadzić przez amputację pojedynczych palców na przednich lub tylnych kończynach. Często stosuj metodę nakładania kolorowych plam na niepigmentowaną wełnę. Zakażenie zwierząt laboratoryjnych.

  • 1. podskórnie - plecy.
  • 2. Śródskórnie - pięta
  • 3. Domięśniowo - udo
  • 4. Dożylnie - w ogon (po uprzednim natarciu gorącą wodą i wyciśnięciu)
  • 5. Donosowo - kropla do nosa (wcześniej podać słabe znieczulenie eterem, aby zapobiec kichaniu)
  • 6. Międzymózgowe - czaszkę ostrożnie wierci się igłą, nie naciska, kropla sama zniknie.

Wszystkie powierzchnie są wstępnie nasmarowane alkoholem jodowanym.

Przygotowanie laboratorium. zwierzęta (na przykładzie białej myszy)

  • - Skórę smaruje się środkiem dezynfekującym.
  • - Nacięcie wykonuje się wzdłuż kresy białej.
  • - Otwarcie mostka - pobiera się płuca i umieszcza w probówce nr 1
  • - Otwarcie jamy brzusznej - pobiera się wątrobę, śledzionę, nerkę i umieszcza w probówce nr 2.
  • - Czaszka jest otwarta. Pobiera się mózg, wykonuje skrawki z 4 warstw, kawałki umieszcza się na bibule filtracyjnej i wykonuje odbitki na szkle.

ZWIERZĘTA LABORATORYJNE- różne rodzaje zwierząt specjalnie hodowanych w laboratoriach lub szkółkach do celów doświadczalnych lub przemysłowych. Ł. zastosowanie w celu diagnozowania chorób, modelowania różnych fizioli, patoli, stanów, badań do ustalenia.- profesjonalne, leki, czynniki chemiczne i fizyczne, produkcja preparatów biologicznych - surowice diagnostyczne, szczepionki, hodowle tkankowe itp.

Zwierzęta laboratoryjne obejmują zwierzęta z różnych grup systematycznych: pierwotniaki, robaki, stawonogi, szkarłupnie, płazy, ptaki i ssaki. Jednak najczęściej L. Zh. dzieli się na bezkręgowce i kręgowce.

Zwierzęta laboratoryjne kręgowców

Wykorzystywanie kręgowców przez człowieka do celów poznawczych rozpoczęło się najwyraźniej wraz z rozwojem hodowli bydła. Następnie zwierzęta zaczęły badać budowę i funkcje różnych narządów żywych organizmów. W szczególności znane są obserwacje starożytnego greckiego przyrodnika Diogenesa (V wpne), który otwierając zwłoki zwierząt ustalił różne funkcje przedsionków. Później anatomię i fizjologię badali na zwierzętach Arystoteles, K. Galen, W. Garvey itp. Początkowo eksperymenty przeprowadzano na zwierzętach domowych. w XV wieku białe myszy, szczury i świnki morskie stały się znane. Jednak koncepcja „zwierząt laboratoryjnych” rozwinęła się pod koniec XIX wieku.

Łącznie w medycynie – biol, do badań wykorzystuje się aż 250 gatunków zwierząt. Niektóre gatunki są stale hodowane w laboratoriach i szkółkach do badań naukowych (białe myszy, białe szczury, świnki morskie, króliki, chomiki, koty, psy, małpy, mini-świnki itp.). Inne są okresowo łapane do celów eksperymentalnych (norniki, myszoskoczki, susły, fretki, świstaki, pancerniki, lemingi, płazy, ryby itp.). Jest laboratorium grupowe. ptaki (kurczęta, gołębie, kanarki, przepiórki itp.). Część miodu. eksperymenty przeprowadzane są na stronie - x. zwierzęta (owce, świnie, cielęta itp.). Z ogólnej liczby L.. myszy stanowią ok. 70%, szczury – 15%, świnki morskie – 9%, ptaki – 3%, króliki – 2% i pozostałe – 1%.

Zainteresowanie badaczy gryzoniami wynika głównie z faktu, że wiele z nich ma małe rozmiary ciała, wysoką płodność i krótką żywotność; w ciągu kilku miesięcy życia gryzonia można prześledzić procesy zachodzące w organizmie człowieka od lat. Średnia długość życia białych myszy wynosi 1,5-2 lat, szczurów 2-2,5 lat, chomików 2-5 lat, świnek morskich 6-8 lat, królików 4-9 lat.

Podczas hodowli L.. przeprowadzać kontrolę cech genetycznych, ekologicznych, morfologicznych, a także ze względów zdrowotnych.

genetycznie l. dzieli się na nieliniowe (heterozygotyczne) i liniowe (homozygotyczne). Zwierzęta nieliniowe są hodowane na podstawie przypadkowych krzyżówek i dlatego mają wysoki stopień heterozygotyczności. Zwiększenie chowu wsobnego (patrz) w tej grupie L. Zh. nie więcej niż 1% na pokolenie jest dozwolone.

W jednostkach naukowych, w których prowadzone są badania nad L., powinny istnieć oddziały naukowe i pomocnicze: wiwarium (zob.) oraz klinika eksperymentalno-biologiczna. Wiwarium zawiera i częściowo hoduje niektóre typy zwierząt z późniejszym przeniesieniem ich do badań doświadczalnych. Eksperymentalna klinika biologiczna zawiera wyłącznie zwierzęta, na których prowadzone są badania. Wiwaria i eksperymentalne kliniki biologiczne znajdują się w osobnym budynku (zespole budynków). Dla zwierząt ziemnowodnych i ryb wykorzystywanych w doświadczeniach przewidziano odpowiednie pomieszczenia.

Aby sprostać stale rosnącemu zapotrzebowaniu na L. różnych typów, linii i kategorii, powstała samodzielna gałąź gospodarki - hodowla zwierząt laboratoryjnych z odpowiednim zapleczem naukowym i przemysłowym. Zorganizowano odpowiednie szkolenia pracowników. == Bezkręgowce laboratoryjne == Oprócz kręgowców w laboratoriach wykorzystuje się również wiele bezkręgowców: pierwotniaki, robaki, stawonogi (owady, roztocza) itp. Cele i metody ich wykorzystania jako L. g. bardzo zróżnicowane. Niezbędne przedmioty do różnych laboratoriów. badaniami od dawna zajmują się pierwotniaki (typ Protozoa). Szybkość ich reprodukcji, niewielkie rozmiary, względna prostota i łatwość utrzymania w laboratorium sprawiają, że najprostsze modele eksperymentalne są najtańsze (patrz: pierwotniaki).

Opracowano metody zamrażania i długoterminowego przechowywania niektórych rodzajów pierwotniaków (trypanosomów, leiszmanii, toksoplazmy itp.) w ciekłym azocie. Metoda ta pozwala na tworzenie kriobanków szczepów pierwotniaków, co jest wygodne przy stosowaniu ich jako L..

Zdolność wielu pierwotniaków do rozmnażania bezpłciowego jest warunkiem wstępnym uzyskania czystych linii pierwotniaków - klonów, które służą jako niezbędny obiekt do badań genetycznych, immunologicznych i innych.

Przygotowując doświadczenia z pierwotniakami należy brać pod uwagę nie tylko ich gatunek, szczep czy izolat, ale często także przynależność do określonej linii genetycznej. Świetna cena w laboratorium. ma wiedzę na temat cyklu życia rozwoju najprostszego i poszczególnych etapów tego cyklu (patrz Cykl życia).

Podczas pracy z pierwotniakami istotny wpływ mają biotyczne i abiotyczne czynniki środowiskowe.

Duże ameby (Amoeba proteus, Chaos, Pelomyxa itp.) są wykorzystywane w badaniach cytogenetycznych i innych, w szczególności w analizie zmienności dziedzicznej, występowania i częstości mutacji. W eksperymentach mikrurgicheskich otrzymano hybrydy nuklearno-cytoplazmatyczne - heterokariony, które badają zjawisko niezgodności przeszczepów, zmienność epigenetyczną itp. Na obiektach tych przeprowadza się różnorodne obserwacje dotyczące skutków promieniowania jonizującego i ultrafioletowego, chem. mutageneza.

Orzęski są również klasycznymi obiektami badań cytogenetycznych, w tym analizy genetycznej w badaniu niektórych problemów zmienności i dziedziczności. Orzęski służą jako wygodne obiekty w badaniach toksykologicznych, a także w badaniu biolu, wpływu promieni ultrafioletowych, promieniowania przenikliwego i innych czynników. Uwzględnia to zmiany prędkości i charakteru ruchu, pulsacje kurczliwych wakuoli, aparat jądrowy, zaburzenia tempa podziałów itp. W ostatnich latach niektóre rodzaje orzęsków znalazły szerokie zastosowanie w eksperymentach z zakresu biologii molekularnej, m.in. zwłaszcza w inżynierii genetycznej. Do pielęgnacji orzęsków in vitro opracowano różnorodne pod względem składu podłoża – od najprostszych w postaci naparów z ziół i liści, po złożone syntetyczne o z góry ustalonym składzie chemicznym. kompozycja.

Warunkiem koniecznym wykorzystania stawonogów w eksperymencie jest sprawdzenie pierwotnej naturalnej populacji (przodka kultury laboratoryjnej) pod kątem czystości linii - braku naturalnego zakażenia patogenami, gdyż stawonogi wysysające krew mają decydujące znaczenie jako nosiciele i opiekunowie patogenów wielu infekcji zakaźnych (riketsjozy, infekcje arbowirusami, leiszmaniozy, filariozy, malarii itp.). Aby określić stopień udziału dowolnego gatunku stawonogów w przenoszeniu czynników zakaźnych lub jego rzeczywistą rolę w epidemiologii i epizootologii, konieczne jest przeprowadzenie badań eksperymentalnych z krwiopijnymi stawonogami i patogenami.

Kleszcze Argas (Argasidae) i Ixodidae (Ixodidae) służą do długotrwałego zabezpieczania patogenów wywołujących krętki, riketsjozy, zakażenia arbowirusami itp.

Kleszcze, komary, komary, muchy i inne stawonogi są wykorzystywane w doświadczeniach do testowania skuteczności insektycydów, roztoczobójców i repelentów, a także do opracowywania biol, metod zwalczania wektorów patogenów ludzi i zwierząt oraz szkodników rolniczych.

Do badań doświadczalnych jako nosicieli patogenów naturalnych ogniskowych chorób człowieka (zapalenie mózgu, gorączka krwotoczna, riketsjoza itp.), a także przy testowaniu skuteczności akarycydów i opracowywaniu specyficznych metod biol, zwalczania, kleszczy ixodid (rodzaj Ixodes, Haemaphysalis, Hyalomma, Rhipicephalus, Dermacentor). Kleszcze Ixodid są łatwo hodowane w laboratorium. warunki. Aby utworzyć laboratorium. hodowle kleszczy ixodid zebrano z S.-x. zwierząt (już pijanych krwią) lub z roślinności w naturalnych siedliskach (głodnych). Nasycone roztocza umieszcza się w specjalnie zamontowanych nawilżonych probówkach do składania jaj. Głodne kleszcze są karmione L. pod czepkami płóciennymi, które przykleja się do grzbietu zwierzęcia żywiciela (świń, królików, myszy, chomików, a także owiec i bydła). Przy odpowiedniej pielęgnacji roztocze tej samej linii są hodowane w laboratorium latami.

Wygodne laboratorium. modelem są roztocza argas (rodzaj Ornithodoros, Alveonasus, Argas). Służą do eksperymentalnego badania związku kleszczy z patogenami (krętki, wirusy, riketsje), a także do długoterminowego (długoterminowego) zachowania patogenów w stanie aktywnym. Podczas hodowli roztocza argas są karmione L. lub krwią zwierząt przez błonę przygotowaną ze skóry myszy lub kurczaka. Opracowano metodę karmienia roztoczy argasydów na zarodku kury poprzez ponowne umieszczenie ich w komorze powietrznej jaja. Kleszcze Alveonasus lahorensis, Ornithodoros papillipes i inne są hodowane w laboratoriach od wielu dziesięcioleci.

jako L. stosuje się również roztocza gamasy ( Gamasoidea ). Wśród nich roztocza Ornithonyssus bacoti (kleszcz szczura), Dermanyssus gallinae (kleszcz kurzy), Allodermanyssus sanguineus (kleszcz myszy) są szczególnie wygodne do trzymania w laboratorium. Roztocza Gamasovy wykorzystują do modelowania inf. proces w riketsjozie, kleszczowym zapaleniu mózgu, tularemii, gorączkach krwotocznych. W laboratorium urządza się tzw. roślina jest sztucznym gniazdem, w którym umieszczane są kleszcze i L. (myszy, kurczaki itp.) do ich karmienia. W razie potrzeby kleszcze są pobierane z rośliny i przetrzymywane w specjalnych nawilżanych komorach na czas doświadczenia i obserwacji.

Do prac eksperymentalnych w różnych laboratoriach hoduje się krwiopijne komary (Culicidae) różnych rodzajów (Aedes, Anopheles, Culex). W niektórych przypadkach wygodnie jest używać komarów z rodzaju Culex pipiens molestus, które są łatwe do rozmnażania w laboratorium; zapłodnione samice nie wchodzą w diapauzę w sprzyjających warunkach i mogą składać jaja bez uprzedniego karmienia. Larwy wyłaniające się z jaj rozwijają się w wodzie bogatej w materię organiczną.

Spośród komarów z rodzaju Aedes najłatwiej jest hodować komary z gatunku Aedes aegypti, które są nosicielami wirusów żółtej febry i innych chorób ludzkich, a także ptasiego Plasmodium itp. Można je trzymać w stosunkowo małych klatkach; samice komarów żywią się krwią królików lub innych zwierząt. Jaja złożone przez samice Aedes mogą być suche przez długi czas; w celu usunięcia larw umieszcza się je w naczyniu z wodą. Pokarmem dla larw jest proszek ryżowy, proszek z rozwielitek, żółtko jaja itp. Woda w naczyniu z larwami musi być czysta i niezanieczyszczona pokarmem. Naczynia, w których utworzyły się poczwarki, umieszcza się w klatkach z gazy do hodowli komarów.

Hodowle pcheł wyhodowane laboratoryjnie (Aphaniptera) są wykorzystywane do różnych badań eksperymentalnych, w szczególności do badania przenoszenia patogenów dżumy, riketsjozy i innych chorób bakteryjnych u ludzi i zwierząt, badania wpływu różnych insektycydów, repelentów itp. używany. Najwygodniejsze do hodowli w laboratorium są pchły szczurze - Xenopsylla cheopis, Ceratophyllus fasciatus itp. W laboratorium hoduje się je w specjalnych roślinach - szklanych słoikach, do których sadzi się zwierzęta żywicielskie; jako Ł. wykorzystywane są również wszy – nosiciele chorobotwórczych krętków i riketsj.

W celu rozwoju podstaw naukowych hodowli i rozsądnego wyboru konkretnych badań gatunków zwierząt w ZSRR, Anglii, USA, Francji, Niemczech, Japonii i innych krajach organizowane są naukowe ośrodki biologii porównawczej L.. W ZSRR takim ośrodkiem jest Laboratorium Badawcze Doświadczalnych Modeli Biologicznych Akademii Nauk Medycznych ZSRR. Koordynacją prac w tym zakresie zajmuje się Międzynarodowy Komitet ds. Zwierząt Laboratoryjnych (PC LA), z Krymem współpracuje ponad 40 krajów, w tym ZSRR. Corocznie odbywają się konferencje naukowe poświęcone różnym zagadnieniom biologii L. Zh. i biol, modelowanie. Za granicą ukazuje się ponad 30 periodyków poświęconych tym zagadnieniom. Zorganizowano międzynarodowe i regionalne ośrodki: International Reference Centre for Animals with Spontaneous Development of Tumors (Holandia, Amsterdam, Cancer Institute), FAO/WHO International Reference Centre for Animal Mycoplasmas (Dania, Aarhus, medyczne f- t un-ta) . Regionalne Centrum Referencyjne ds. Wirusów Małp (USA, Teksas, Departament Mikrobiologii i Chorób Zakaźnych). Dla ICLA dostępne są ośrodki referencyjne: badania zgodności tkankowej u myszy (PNR), szczurów (Niemcy i USA), świnek morskich (USA), psów (Niemcy), wirusów gryzoni (Czechosłowacja, Anglia, Niemcy, Japonia), bezwłosych myszy (Dania) , w sprawie patogenów ptasiej malarii (Kanada) itp.

W publikacjach wyników badań uzyskanych na L., na zalecenie WHO, należy podać ich rodzaj, linię, wiek, płeć, źródło pozyskania, warunki przetrzymywania i karmienia.

Z dodatkowych materiałów

pancerniki(Dodatek do artykułu o tym samym tytule, opublikowanego w tomie 12) - ssaki z rodziny Dasypodidae Bonaparte, 1838 z rzędu bezzębnych - Edentata.

W rodzinie pancerników występuje 9 rodzajów (21 gatunków). Pancerniki (syn. pancerniki) to najstarsze żyjące ssaki, pospolite w Ameryce Południowej i Środkowej, na południu Stanów Zjednoczonych. Prowadzą nocny tryb życia i żyją w norach. Nazwa „pancerniki” związana jest z obecnością na grzbietowej powierzchni ciała muszli, składającej się z pojedynczych blaszek kostnych pokrytych warstwą rogową naskórka (tzw. szkielet skórny, niespotykany u innych ssaków). Długość ciała pancerników różnych gatunków waha się od 12 do 100 cm, waga do 55 kg.

Pancerniki są wykorzystywane w medycynie i biologii jako zwierzęta laboratoryjne, zwłaszcza pancernik dziewięciopasmowy Dasypus novemcinctus Linnaeus, 1758 (ryc. 1). Długość ciała dorosłego dziewięciopasmowego pancernika wynosi 40-55 cm, waga 3-7 kg; Skorupa składa się z tarcz piersiowych i miednicy, oddzielonych 9 ruchomymi pasami. Cechy biologii dziewięciopasmowych pancerników obejmują niską temperaturę ciała (32-35 °), duże opóźnienie w implantacji blastocysty - do 4,5 miesiąca. (całkowity czas trwania ciąży ok. 9 miesięcy), reprodukcja czworga jednojajowych potomstwa, zdolność do tolerowania przedłużonego braku egzogennego tlenu, obniżone reakcje odporności komórkowej z wyraźnymi humoralnymi reakcjami immunologicznymi; oczekiwana długość życia - do 15 lat.

U pancerników z rodzaju Dasypus z jednego zapłodnionego jaja rozwija się kilka zarodków (prawdziwa poliembrionia), co czyni je unikalnym naturalnym modelem do badania mechanizmów powstawania bliźniąt, a także wielu zagadnień dziedziczności i zmienności. Jednozygotyczne bliźnięta Armadillo są przedmiotem badań transplantologicznych, a także badań immunologicznych, toksykologicznych i teratolowych. badania. Farmakokinetyka leków w pancernikach jest bardzo zbliżona do farmakokinetyki u ludzi. Na przykład stwierdzono, że talidomid powoduje wady rozwojowe płodu u pancerników, czego nie zaobserwowano w innych laboratoriach. Zwierząt.

Pancerniki łatwo przystosowują się do niewoli. Najlepiej trzymać je w małych (2-4 m2) wybiegach z budą lęgową i piaskownicą. Jako materiał ściółkowy zwykle stosuje się skrawki papieru lub mech. W naturze żywią się głównie owadami, robakami, pokarmy roślinne stanowią mniej niż 10% diety. W wiwarium ich dieta obejmuje mięso mielone, jaja, mleko, warzywa i owoce. Pancerniki nie są agresywne, więc opieka i eksperymentalna praca z nimi nie są trudne. W niewoli dziewięciopasmowe pancerniki nie rozmnażają się (niektóre inne gatunki, na przykład szczeciniaste pancerniki, rozmnażają się).

Bibliografia: Bashenina N. V. Poradnik dotyczący trzymania i hodowli nowych gatunków małych gryzoni w praktyce laboratoryjnej, M., 1975, bibliogr.; 3 a-padnyuk I. P., Zapadnyuk V. I. i 3 axar i I. A. Zwierzęta laboratoryjne, Kijów, 1974, bibliogr.; Laboratoryjne metody badania patogennych pierwotniaków, komp. D. N. Zasukhin i in., M., 1957; Lane-Petter U. Zapewnienie badań naukowych na zwierzętach laboratoryjnych, przeł. z angielskiego, M., 1964, bibliografia; Miedwiediew H. N. Liniowe myszy, L., 1964, bibliografia: Sarkisow D. S. i Pem zo w P. I. Rozmnażanie ludzkich chorób w eksperymencie, M., 1960, bibliogr.; Kokcydia, wyd. przez DM Hammond a. PL Długie, s. 482, Baltimore-L., 1973; Flynn R. Pasożyty zwierząt laboratoryjnych, Ames, 19 73; Podręcznik nauk o zwierzętach laboratoryjnych, wyd. przez EC Melby a. NH Altman, v. 1-3, Cleveland, 1974-1976; Kohler D., Madry M. u. Hein-e z ke H. Einfiihrung in die Ver such -stierkunde, Jena, 1978; Muller G.u. K i e s s i g R. Einfiihrung in die Versu-chstierkunde, Jena, 1977.; Sokolov V. E. Taksonomia ssaków, s. 362, M., 1973; W e n i g s z h k e K. Dlaczego pancerniki? w: Modele zwierzęce do badań biomedycznych, s. 45, Waszyngton, 1968; Kirch-h eimer W. F. a. S to r s E. E. Próby ustanowienia pancernika (Dasypus novemcinctus Linn) jako modelu do badania trądu, Int. J. Trąd, w. 39, s. 693, 1971; Merit DA Edentate diety, I. Armadillos, Lab. Nauka o zwierzętach, w. 23, str. 540, 1973; Peppier RD Parametry reprodukcyjne pancernika dziewięciopasmowego, Anat. Rec., w. 193, s. 649, 1979; S to r s E. E. Dziewięciopasmowy pancernik, model do badań biomedycznych, w: Zwierzę laboratoryjne w testach leków. wyd. A. Spiegla, s. 31, Jena, 1973.

VA Duszkin; DH Zasukhin, LM Gordeeva; AA Juszczenko.

Powiązane publikacje:

  1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.
  1. Makarova M.N., Rybakova A.V., Gushchin Ya.A., Shedko V.V., Muzhikyan A.A., Makarov V.G. Anatomiczne i fizjologiczne cechy przewodu pokarmowego ludzi i zwierząt laboratoryjnych // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, nr 1. -S. 82-104.
  2. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Fretki jako zwierzęta laboratoryjne // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2016, nr 2. -S. 103-116.
  3. Rybakova A.V., Kovaleva M.A., Kalatanova A.V., Vanatiev G.V., Makarova M.N. Świnie karłowate jako przedmiot badań przedklinicznych // Międzynarodowy Biuletyn Medycyny Weterynaryjnej. -2016, nr 3. -S. 168-176.
  4. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Fretki jako zwierzęta laboratoryjne // Obrady IV Międzynarodowego Kongresu Farmakologów i Toksykologów Weterynarii „Skuteczne i bezpieczne leki w weterynarii”. Petersburg, 2016. -S. 46-47.
  5. Goryacheva M.A., Gushchin Ya.A., Kovaleva M.A., Makarova M.N. Możliwość zastosowania chlorowodorku lidokainy i chlorku potasu do eutanazji królików laboratoryjnych // Obrady IV Międzynarodowego Kongresu Farmakologów i Toksykologów Weterynarii „Skuteczne i bezpieczne leki w medycynie weterynaryjnej”. Petersburg, 2016. -S. 55-56.
  6. Rybakova A.V., Makarova M.N. Właściwe utrzymanie i pielęgnacja pigmejów do badań przedklinicznych // Obrady IV Międzynarodowego Kongresu Farmakologów i Toksykologów Weterynaryjnych „Skuteczne i bezpieczne leki w medycynie weterynaryjnej”. Petersburg, 2016. -S. 46-47.
  7. Susoev A.I., Avdeeva O.I., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Doświadczenia z badań przedklinicznych leków ulegających rozpadowi w jamie ustnej u chomików // Streszczenia VII konferencji naukowo-praktycznej "Aktualne problemy oceny bezpieczeństwa leków". Elektroniczny dodatek do czasopisma „Sechenovsky Bulletin”. -2016, nr 2(24). -Z. 34-35.
  8. Kalatanova A.V., Avdeeva O.I., Makarova M.N., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Vanatiev G.V., Makarov V.G., Karlina M.V., Pozharitskaya O.N. Zastosowanie worków policzkowych chomika w badaniach przedklinicznych leków rozproszonych w jamie ustnej // Apteka. -2016, nr 7. -Z. 50-55.
  9. Rybakova A.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Wykorzystanie królików w badaniach przedklinicznych // Międzynarodowy Biuletyn Medycyny Weterynaryjnej. -2016, nr 4. -S. 102-106.
  10. Gaidai EA, Makarova M.N. Wykorzystanie koszatniczek jako zwierząt laboratoryjnych // Międzynarodowy Biuletyn Medycyny Weterynaryjnej. -2017, nr 1. -S. 57-66.
  11. Rybakova A.V., Makarova M.N. Charakterystyka zootechniczna trzymania pigmejów w wiwariach doświadczalnych // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 1. -S. 66-74.
  12. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V., Zozulya O.K. Żywienie zwierząt laboratoryjnych. Podstawowe diety. Wiadomość 1. // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 2. -S. 91-105.
  13. Makarova M.N., Makarov V.G., Shekunova E.V. Wybór gatunków zwierząt do oceny neurotoksyczności substancji farmakologicznych // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 2. -S. 106-113.
  14. Rybakova A.V., Makarova M.N. Wykorzystanie myszoskoczków do badań biomedycznych // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 2. -S. 117-124.
  15. Bondareva ED, Rybakova A.V., Makarova M.N. Charakterystyka zootechniczna trzymania świnek morskich w wiwariach doświadczalnych // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 3. -S. 108-115.
  16. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Anatomia porównawcza górnego odcinka przewodu pokarmowego zwierząt doświadczalnych i ludzi // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 3. -S. 116-129.
  17. Makarova M.N., Makarov V.G. Żywienie zwierząt laboratoryjnych. Oznaki niedoboru i nadmiaru białka, tłuszczu, węglowodanów i witamin. Wiadomość 2. // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 3. -S. 129-138.
  18. Makarova M.N., Rybakova A.V., Kildibekov K.Yu. Wymagania dotyczące oświetlenia w pomieszczeniach wiwarium i odchowalni zwierząt laboratoryjnych // Międzynarodowy Biuletyn Medycyny Weterynaryjnej. -2017, nr 3. -S. 138-147.
  19. Rybakova A.V., Makarova M.N. Wykorzystanie chomików w badaniach biomedycznych // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 3. -S. 148-157.
  20. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V. Żywienie zwierząt laboratoryjnych. Oznaki niedoboru i nadmiaru związków mineralnych. Wiadomość 3 // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 4. -S. 110-116.
  21. Muzhikyan A.A., Zaikin KO, Gushchin Ya.A., Makarova M.N., Makarov V.G. Porównawcza morfologia wątroby i pęcherzyka żółciowego ludzi i zwierząt laboratoryjnych // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2017, nr 4. -S. 117-129.
  22. Rybakova A.V., Makarova M.N. Wykorzystanie świnek morskich w badaniach biomedycznych // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2018, nr 1. -S. 132-137.
  23. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Porównawcza morfologia dolnego odcinka przewodu pokarmowego zwierząt doświadczalnych i ludzi // Międzynarodowy Biuletyn Weterynaryjny. -2018, nr 1. - S. 138-150.
  24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., Sparrow E.G., Marie-Paule GT Uzasadnienie szczepienia trójwalentnymi lub czterowalentnymi żywymi atenuowanymi szczepionkami przeciw grypie: Ochronna skuteczność szczepionki na modelu fretki // PLOS ONE. - 2018 r. - s. 1-19.
  25. Rybakova A.V., Makarova M.N., Kukharenko A.E., Vichare A.S., Rüffer F.-R. Istniejące wymagania i podejścia do dawkowania leków u zwierząt laboratoryjnych // Biuletyn Naukowego Centrum Ekspertyz Produktów Leczniczych. – 2018, 8(4). - S. 207-217.

W pracy diagnostycznej laboratoriów bakteriologicznych często trzeba uciekać się do zarażania tzw. zwierząt laboratoryjnych lub doświadczalnych. Najczęściej w codziennej praktyce wykorzystuje się do tego celu małe, najtańsze zwierzęta: białe myszy i szczury, świnki morskie, króliki oraz gołębie i kury. Rzadziej wykorzystywane są psy i koty, a jeszcze rzadziej różne gatunki zwierząt gospodarskich. Celem biologicznych metod badawczych jest określenie patogeniczności lub stopnia zjadliwości badanego materiału, wyizolowanie z materiału czystych kultur drobnoustrojów, wydzielenie mikroorganizmów chorobotwórczych z mieszaniny z gatunkami saprofitycznymi itp. Zwierzęta laboratoryjne są również szeroko wykorzystywane w praktyce serologicznej : świnki morskie - w celu uzyskania dopełniacza, króliki (owce, cielęta) - w produkcji różnych surowic aglutynujących, hemolizyny, erytrocytów itp. Do produkcji specjalnych pożywek uzyskuje się krew, surowicę, różne narządy, tkanki itp. od zwierząt Ponadto zwierzęta laboratoryjne są szeroko wykorzystywane do określania właściwości leków biologicznych i chemioterapeutycznych, a także prac naukowych i eksperymentalnych. Zwierzęta laboratoryjne służą również do diagnozowania niektórych chorób zakaźnych, symulowania eksperymentalnych ostrych i przewlekłych procesów zakaźnych, ustalania zjadliwości i toksyczności badanych szczepów drobnoustrojów, określania aktywności przygotowanych szczepionek i badania ich nieszkodliwości.

Laboratoria bakteriologiczne do codziennej pracy zazwyczaj hodują zwierzęta laboratoryjne w specjalnie do tego celu zorganizowanych szkółkach. Dzięki temu zawsze można uzyskać wystarczającą ilość sprawdzonego i nienagannej jakości materiału doświadczalnego. Jeśli zwierzęta nie są hodowane, a tylko trzymane w laboratorium, to pomieszczenie dla nich nazywa się wiwarium. Nowe partie zwierząt są kupowane ze szkółek. Warunki przetrzymywania i karmienia w tych jednostkach są prawie takie same, dlatego też w poniższym materiale nie będzie różnicowania wskazanych struktur laboratorium.

Krótka informacja o utrzymaniu, hodowli, żywieniu i chorobach zwierząt laboratoryjnych

Obsada zwierząt w szkółkach powinna w miarę możliwości odpowiadać warunkom ich bytowania w przyrodzie. Przepis ten dotyczy w szczególności dzikich, dziko urodzonych zwierząt i ptaków (dzikich gołębi, wróbli, myszy szarych domowych i szczurów). W niesprzyjających warunkach do trzymania i karmienia zwierzęta te szybko giną w niewoli (zwłaszcza wróble i myszy szare). Warunkiem pomyślnego funkcjonowania szkółki jest ścisłe przestrzeganie wszelkich zasad weterynaryjnych, sanitarnych, zootechnicznych i zoohigienicznych. Te ostatnie przewidują trzymanie zwierząt w przestronnych, jasnych, suchych i czystych klatkach, w dobrze wentylowanych pomieszczeniach o normalnej temperaturze, racjonalne i kompletne żywienie oraz środki zapobiegawcze zapobiegające różnym chorobom. Duże znaczenie dla szkółki ma dobry skład producentów (kocury i samice).

Żłobek (wiwarium) powinien mieć kilka przegródek do trzymania różnych gatunków zwierząt (królików, świnek morskich, myszy itp.). Struktura wiwarium obejmuje:

    dział kwarantanny i adaptacji nowo przybyłych zwierząt;

    eksperymentalna klinika biologiczna do trzymania zwierząt w eksperymencie;

    izolatory dla zwierząt podejrzanych o choroby zakaźne oraz zwierząt ewidentnie chorych, których zniszczenie jest niepożądane w warunkach doświadczenia;

    pomieszczenie doświadczalne (lub pomieszczenie manipulacyjne), w którym przeprowadza się ważenie, termometry, infekcję, szczepienie zwierząt, pobieranie krwi i inne procedury.

Wyposażenie sali doświadczalnej jest każdorazowo uwarunkowane zadaniami i warunkami prowadzonych badań naukowych.

Oddział kwarantanny, oddział doświadczalny i izolatka dla zakażonych zwierząt znajdują się w pomieszczeniach ściśle odizolowanych od siebie i od wszystkich pozostałych pomieszczeń wiwarium.

Oprócz głównych jednostek strukturalnych wymienionych powyżej, wiwarium powinno zawierać:

a) kuchni paszowej składającej się z dwóch przylegających do siebie pomieszczeń do przetwarzania i produkcji pasz z niezależnym dostępem do korytarza z każdego pomieszczenia, spiżarni ze specjalnie wyposażonymi skrzyniami (metalowymi lub wyściełanymi wewnątrz blachą) oraz lodówek do przechowywania pasz,

b) wydział dezynfekcji i mycia 2 pomieszczeń, połączonych autoklawem przejściowym lub komorą sucho-grzewniczą.

Pracę działu dezynfekcji i mycia determinuje stan materiału wprowadzanego do obróbki. Zainfekowany materiał, taki jak klatki, ściółka, karmniki, jest najpierw dezynfekowany, a następnie poddawany mechanicznemu czyszczeniu i myciu. Materiał nie stwarzający zagrożenia infekcyjnego poddawany jest najpierw czyszczeniu mechanicznemu, a następnie (w razie potrzeby) sterylizacji.

Myjnia w odpowiednio zorganizowanym wiwarium posiada zsyp na śmieci do usuwania ścieków oraz wózek widłowy do dostarczania materiału i sprzętu do wiwarium.

Obok działu dezynfekcji i mycia znajduje się magazyn inwentarza czystego (rezerwowego) z klatkami, poidłami, karmnikami itp., pomieszczenia gospodarcze oraz węzeł sanitarny (prysznic i toaleta) dla personelu.

Zgodnie z obowiązującymi przepisami sanitarnymi wiwarium znajduje się w osobnym budynku lub na ostatnim piętrze budynku laboratorium. Umieszczając wiwarium w budynku laboratoryjnym, należy je całkowicie odizolować od wszystkich innych pomieszczeń.

Pomieszczenie do trzymania zwierząt laboratoryjnych powinno być ciepłe, jasne i suche, z centralnym ogrzewaniem, oświetleniem naturalnym i sztucznym, wymuszoną wentylacją nawiewno-wywiewną, zaopatrzeniem w ciepłą i zimną wodę.

Podłogi w wiwarium wykonane są z wodoodpornego materiału, bez listew przypodłogowych, ze spadkiem w kierunku otworów lub rynien podłączonych do kanalizacji. Ściany pokryte glazurą, sufity i drzwi pomalowane farbą olejną.